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一般细胞长至80%-90%密度则需要传代消化,贴壁细胞传代前,需要把细胞用消化试剂从培养容器表面解离出来,细胞得以分离成单个悬液传代至含新鲜培养基的新容器内。
细胞消化常用方法 酶消化法 胰酶。这是用得最多的。一般浓度在0.25-0.5%。作用时间根据细胞种类、作用温度等因素而变化很大,从几分钟到几十分钟不等。 0.25%的胰酶作用于单层贴壁的细胞,在37度条件下,一般消化1-5分钟就足够了。终止是用血清。主要作用于细胞间。配制时不能用含钙、镁的平衡液,否则影响活性。保存于-20度。
不破坏细胞表面分子,仅与CAMs螯合,因此,如果检测细胞表面分子的话,尽量,甚至是一定不要用酶消化法。 EDTA。一般浓度在0.02%左右。作用于细胞与间质,对细胞间也有一定作用。注意,它能显著影响pH值,而且在弱碱性条件下才易溶。因此,配制时应调节好酸碱度。它不能被终和。因此,消化下来的细胞要洗一遍。
直接吹打或用细胞刮子将细胞刮下来。
细胞消化液
1、在显微镜下观察细胞 ,当细胞融合度达到 90%,即可传代。 2、在超净台/安全柜中,吸走培养瓶中旧的培养液,加入 PBS 溶液洗一次,加入细胞消化液使之*覆盖皿/瓶底。 3、室温孵育 4-5 分钟或 37℃孵育 2-3 分钟(不同细胞类型消化时间略有差异),显微镜下观察到大 部分细胞边缘开始脱离皿/瓶底。 4、加入与消化液等倍体积细胞培养基,用移液器轻轻吹打瓶壁上未*脱离的细胞,并轻轻吹打混 匀,使细胞*分散。 5、将细胞悬液转移到离心管中,1200 rpm 离心 3 min。 6、弃上清,加入对应细胞培养液,重悬细胞,按比例进行传代,均匀铺在培养皿/瓶中,置于 37℃, 5%CO2 条件下培养。
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