Q1:类器官和肿瘤球有什么区别?
A1:类器官中多种不同类型的细胞,可以在体外自我分化自我组装,具有干性可以进行传代;肿瘤球只有单一细胞。
Q2:如何避免原代培养中的污染问题?
A2:动物源性的样本一般比人源的更容易污染,尤其是一些胃肠、泌尿系统,培养过程可以添加一些庆大霉素或者抗生素。
Q3:药筛常用的指标有哪些?
A3:一般IC50用的比较多。
Q4:为什么类器官不会缺少营养?是因为长在基质胶里吗?
A4:因为类器官中有多种细胞类型,并且是一个腔状的结构,所以不会吸收不到营养。
Q5:组织来源的类器官和ipsc的有什么区别?组织的大小和体积有什么要求吗?
A5:组织的大小建议黄豆大小;IPS主要是干细胞诱导的,周期比较长,优点在于纯度比较高,但是一般不能传代。
Q6:类器官和肿瘤球哪个在药筛中使用更广泛?
A6:类器官做药筛是目前的一个新的趋势,后续应用会更广泛一些。
Q7:类器官培养到什么时候可以加药?
A7:一般建议是长到200-300um可以加药,传代的第2代或者第3代。
Q8:IC50与临床用药浓度有什么联系?IC50的用途
A8:IC50 主要是对药物敏感性的判断,与用药的浓度是有一定关系的。
Q9:类器官药筛中是如何选择药物的?浓度范围多大?
A9:举例:如果是检测化合物,化合物中都有IC50值,我们直接扩大1000倍。
Q10:PBMC和类器官共培养还需要添加基质胶吗?
A10:可以加基质胶,也可以不加。
Q11:药筛怎么做正常组织类器官对照?
A11:用DMSO做对照即可。
Q12:类器官培养冻存后一般可以传几代?冻存需要有特殊的细胞冻存液吗?
A12:主要看类器官的干性,干性比较好可以传20代以上;冻存液需要类器官专用的无血清冻存液。
Q13:类器官培养2-3天直径可以达到多少?
A13:主要看类器官生长的情况,一般是100-200um.如果类器官初始体积就比较大,直径会更大一些。
Q14:组织养成的类器官多次传代,可以用于提出肿瘤原代细胞吗?
A14:原理上是可以的,把基质胶铺薄一些让其贴壁,再把培养基换成常规血清培养基。
Q15:组织提取的原代细胞只能传代3-5次,为什么类器官可以传很多次?
A15:因为原代细胞是单一细胞系,一些增殖的基因会起到抑制作用,但是类器官中是有干细胞的,每一代的类器官中都有一些具有干性的原代祖细胞,所以可以一直传代,而且类器官的培养基可以保持细胞干性,抑制其分化能力。
Q16:加药后如何判断药物敏感性?用哪些方法检测?
A16:一种是观察明场图片,另外就是终点法,像比较常见的CCK8、ATP细胞活性检测、活死染色法也可以。
Q17:检测IC50一般采取什么方法?
A17:比较常见的是CCK8检测、ATP细胞活性检测、活死染色法。
Q18:做实验选用第几代的类器官比较好?
A18:建议3-5代是比较好的。
Q19:类器官怎么计数?
A19:常规显微镜4倍镜下进行计数即可;另外可以用细胞计数仪进行计数。
Q20:类器官直径多大是可以加药?第几天可以测ATP
A20:200-300um;建议是在加药后120小时以上。
Q21:老鼠人源肿瘤肺转移模型可以做类器官吗?
A21:这种属于肿瘤球构建。
Q22:类器官传代怎么消化?
A22:有专用的类器官消化液,还可以借助一些机械的消化手段,一般是1-2min,千万不要用胰酶消化。
Q23:原代消化建议多长时间?
A23:用我们AG8亚国服务的消化液是10-15min,常规文献中的要根据不同组织类型去判断。
Q24:类器官可以分泌外泌体吗?
A24:可以的,但是纯度是不一样的。
Q25:很多药物对类器官的渗透深度有限,如何保证可以进入到200- 300um深层的位置?后续染色pi染色可以渗透到最内的深度吗?
A25:药物并一定要渗入到深层,作用一部分的就会起作用,因为类器官之间是相互作用的,这一点区别于肿瘤球,主要是肿瘤球中间是没有缝隙的。
Q26:不同器官来源的类器官形态差别大吗? 都是腔状结构吗?
A26:差别比较大的,每个类器官的形态都是有一定的区别。
Q27:加药后展示变化明场图片一般时间间隔多久要拍一次?
A27:建议每2天拍一次,培养过程多进行观察,有条件可以每日观察。
Q28:如何在药筛过程中保持孔间一致性?
A28:每个孔建议是50个类器官,因为类器官没有办法计数,所以每个孔多少还是会有差距。
Q29:类器官可以直接在基质胶里染色吗?
A29:不建议这样操作,建议把类器官悬浮在缓冲液或者培养基中进行染色。
Q30:肺癌类器官一开始是腔状的,后面越长越实是正常的吗?
A30:是正常的。因为肺在长过程是会有一个M1型到M2型的转化的。
Q31:离心提高到300g下不来如何处理?
A31:不同厂家离心力不同,提议自己摸索实验室转速,适当提高。
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