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实验小白来集合!染色质免疫共沉淀(ChIP)实验流程与常见问题

更新时间:2023-09-14      点击次数:702

染色质免疫共沉淀技术的原理是在活细胞状态下固定蛋白质-DNA复合物,并将其随机切断为一定长度范围内的染色质小片段,然后通过免疫学方法沉淀此复合体,特异性地富集目的蛋白结合的DNA片段,通过对目的片断的纯化与检测,从而获得蛋白质与DNA相互作用的信息。

 

一、细胞交联与裂解


在装有20ml生长培养基的150mm培养皿中培养贴壁细胞,长到80%-90%密度,约107个细胞。如有必要,可进行刺激或处理。建议采用1×106个细胞作为一次ChIP的细胞量。

 

1)在20ml培养基中加入终浓度为1%的甲醛,轻轻涡旋培养皿混匀,使细胞在甲醛中固定,室温固定10分钟(对于转录因子和转录辅因子,可适当延长交联时间,但不超过30分钟)。加入甲醛后培养基的颜色会发生改变;

2)在培养皿中加入浓度为0.125M的甘氨酸,轻轻涡旋混匀,室温反应5分钟,淬灭未反应的甲醛,终止交联。加入甘氨酸后培养基的颜色会发生改变;

3)弃培养基,20ml预冷的1×PBS洗涤细胞,重复洗涤一次;

4)在培养皿中加入2ml 预冷的含蛋白酶抑制剂混合物的1×PBS;使用细胞刮收集细胞,4°C,800g,离心5分钟;

5)去除上清液(此步细胞可在液氮中快速冷却,存放于-80°C保存几个月),细胞再次重悬于0.5ml含蛋白酶抑制剂混合物的细胞裂解缓冲液中,冰上孵育15分钟,每5分钟涡旋一次;

6)4°C,800g,离心5分钟。小心去除上清液,加入0.5ml含蛋白酶抑制剂混合物的细胞核裂解缓冲液,使其重悬。


二、超声处理片段化 DNA

 

超声处理的效果取决于细胞类型、细胞浓度和仪器。需要通过预实验确定超声的最佳条件,以便将交联DNA剪切为如上图的约200-1000bp长度。染色质片段化对于ChIP实验成功很关键。片段化不足会导致样本丢失,片段化过度会破坏靶标蛋白表位、降低ChIP效率。在超声过程中,保持样品一直处于冰上低温状态。不要使探头接触超声管底部或管壁,如超声过程产生泡沫,需暂停超声并调整超声管位置。

 

超声处理后,4°C,12000g离心10分钟。离心后,留取5μl染色质溶液进行琼脂糖凝胶分析,以检测超声效率。可将超声前和超声后各取的5μl染色质溶液对比分析。


图1 超声前超声后

 

三、靶蛋白和DNA 免疫共沉淀

 

将下述缓冲液放于冰上保存:低盐洗涤缓冲液高盐洗涤缓冲液,LiCl洗涤缓冲液和TE洗涤缓冲液。配制450μl稀释缓冲液(含蛋白酶抑制剂混合物),冰上保存。如有多个样品可合并配制。

 

1)取上述50μl离心后的裂解液上清加入到新的离心管中,作为一次免疫沉淀实验的DNA混合物样本。每50μl 裂解液中含有1×106个细胞裂解产物。ChIP反应包括阳性对照抗体管、阴性对照IgG管和目的蛋白抗体管。推荐阴性对照IgG和目的抗体使用同一物种来源。

2)在上述50μl片段化染色质样品的离心管中加入上述配制好的450μl稀释缓冲液,充分混匀。每管取5μl样品于新的离心管中作为实验的1% “input",用于实验的优化与数据处理,保存于4°C,直至蛋白DNA复合物洗脱与解交联步骤。

3)取完inpμt的离心管中分别加入1-10μg免疫沉淀抗体,4°C转子上孵育4h以上或过夜。

4)每个离心管中加入20μl蛋白A/G磁珠(建议将吸头前端剪去一小部分后再吸取磁珠),4°C转子上孵育2h。

5)磁力架吸附,静置1-2分钟,去上清。按如下步骤洗涤蛋白A/G磁珠-抗体-蛋白/DNA复合物:

低盐洗涤缓冲液,4°C转子上孵育3-5分钟,洗涤一次;

高盐洗涤缓冲液,4°C转子上孵育3-5分钟,洗涤一次;

LiCl 洗涤缓冲液,4°C转子上孵育3-5分钟,洗涤一次;

 

注:使用前将等体积A液及B液混匀,请勿提前混匀,否则会导致出现沉淀析出。TE 缓冲液,4°C转子上孵育3-5分钟,洗涤一次。


图2 靶蛋白和DNA免疫共沉淀示意图


四、洗脱和解交联

 

实验前准备:解冻蛋白酶K;ChIP洗脱缓冲液恢复至室温,以确保SDS溶解;配制洗脱缓冲液;ChIP洗脱缓冲液100μl+蛋白酶K 1μl(多个样本可合并配制)。

1)样品管及Input管加入ChIP洗脱缓冲液(含蛋白酶K);

2)62°C孵育2小时;

3)在95°C下培养10分钟;

4)让样品冷却至室温;

5)10000g离心10秒收集管盖及管壁上残留样品,采用磁力架分离磁珠。将上清液小心转移至一个新的试管中。

 

五、DNA 纯化

采用纯化柱进行DNA纯化(免疫沉淀和input)。

 

六、鉴定分析

QPCR或者高通量测序的方法检测IP得到的DNA。

 

七、常见问题

 

常见问题

常见原因/解决办法

阴性对照(IgG IP)样品的背景高

1、优化抗体的浓度,过量抗体导致非靶点的结合;

2、与微珠的非特异结合:采用预纯化步骤,以排除这些非靶点,或加入微珠的封闭剂;
3、染色质的不充分断裂:优化断裂过程,以获得长度在200-1000bp的染色质;

4、试剂被污染;

5、增加洗涤次数。

DNA 回收率低

1、ChIP 抗体失效或亲和力低,使用 ChIP验证过的抗体;

2、抗体使用量不足;

3、起始样品不足,可适当增加起始样品用量;

4、过度交联或交联不足;
5、磁珠与抗体的亲和力低。

无法找到合适的ChIP抗体,该如何做ChIP实验?

1、使用标签抗体是一种解决抗体无法获得、抗体可变性和交联染色质的表位被遮蔽的方法。不过标签有可能干扰转录因子的功能;

2、尝试IP/IHC/IF抗体,效果需要自己摸索鉴定。

阴性对照抗体如何选择?

使用与ChIP抗体相同物种的正常IgG,因此如果使用小鼠单克隆抗体,建议使用正常小鼠IgG。

 

货号

品名

规格

abs50034

染色质免疫共沉淀(ChIP)试剂盒

22T

abs47050830

甘氨酸

1kg

abs961

10×PBS缓冲液

500ml

abs9118

蛋白酶K

100mg

abs9330

核糖核酸酶 A

150ul

 

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WB相关:ECL发光液、预染marker、预制胶;IHC相关:二抗试剂盒、组化笔;IP/CoIP试剂盒;激动剂/抑制剂;血清、BSA、蛋白酶K、CTB、TTX、CEE;凋亡试剂盒;呼吸爆发试剂盒;ELISA试剂盒;重组蛋白;抗体: 二抗、标签抗体、对照抗体;定制服务(抗体/多肽/蛋白/标记/检测)...

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